SUPLEMENTAÇÃO DO MEIO DE REFRIGERAÇÃO ESPERMÁTICA COM VITAMINA C E CATALASE EM SÊMEN OBTIDO DE CÃES JOVENS E IDOSOS

Autores

  • Marina Landim Alvarenga
  • Bethânia Vieira Lopes
  • Viviane Helena Chirinéa
  • Rodrigo Freitas Bittencourt
  • Maria Denise Lopes

Palavras-chave:

antioxidante, sêmen refrigerado, cão

Resumo

O uso de sêmen refrigerado é uma boa opção na rotina clínica de inseminação, sendo um método prático e barato que permite melhor preservação da fertilidade quando comparado ao sêmen congelado. Contudo, o período de sobrevivência dos espermatozoides é curto. A adição de moléculas antioxidantes ao meio de diluição pode reduzir o estresse oxidativo durante o armazenamento e assim melhorar sua qualidade. O objetivo desse trabalho foi avaliar o efeito da adição da catalase e vitamina C ao diluente sobre a qualidade do sêmen canino refrigerado. Para isso foram utilizados cinco cães com idade variando de 2 a 5 anos, e cinco com mais de sete anos. O sêmen foi colhido e dividido em três amostras para a refrigeração nos meios controle (sem adição de antioxidante), com adição de vitamina C e com adição de catalase. Antes e após a refrigeração as amostras foram analisadas através do sistema computadorizado CASA, da análise da morfologia espermática e da integridade das membranas plasmática e acrossomal. No presente trabalho a única variável que se beneficiou da ação dos antioxidantes foi à integridade do acrossomo nas amostras de sêmen resfriado obtidas de animais idosos. Além disso, neste mesmo grupo a concentração de catalase utilizada parece ter tido um efeito deletério sobre parâmetros da motilidade espermática. Estes resultados reforçam a evidencia de variações individuais na resposta a refrigeração espermática e indicam a necessidade de um maior número de estudos envolvendo animais com idades diferentes.

Referências

Johnston SD, Kustritz MVR, Olson PNS. Canine and feline theriogenology. Philadelphia: Ray Kersey; 2001.

Linde-forsberg C. Artificial insemination with fresh, chilled extended, and frozen-thawed semen in the dog. Semin Vet Med Surg (Small Anim). 1995; 10: 48-58.

Aitken RJ, Krausz C. Oxidative Stress, DNA damage and the Y chromosome. Reproduction. 2001; 122: 497-506.

Calamera JC, Fernandez PJ, Buffone MG, Acosta AA, Doncel GF. Effects of long-term in vitro incubation of human spermatozoa: functional parameters and catalase effect. Andrologia. 2001; 33: 79-86.

Griveau JF, Le Lannou D. Reactive oxygen species and human spermatozoa: physiology and pathology. Int J Androl. 1997; 20 (2): 61-69.

Agarwal A, Prabakaran S, Allamaneni S. What an andrologist / urologist should know about free radicals and why. Urology. 2006; 67: 2-8.

Kovalski NN, De Lamirande E, Gagnon C. Reactive oxygen species generated by human neutrophils inhibit sperm motility: protective effect of seminal plasma and scavengers. Fertil. Steril. 1992; 58: 809-816.

Moustafa MH, Sharma RK, Thornton J, Mascha E, Abdel-hafez MA, Thomas AJ, Agarwal A. Relationship between ROS production, apoptosis and DNA denaturation in spermatozoa from patients examined for infertility. Hum. Reprod. 2004; 19(1): 129-138.

Saleh RA, Agarwal A. Oxidative stress and male infertility: from research bench to clinical practise. J. Androl. 2002; 23(6): 737-752.

Aitken RJ, Fisher H. Reactive Oxygen Species generation and human spermatozoa: the balance of benefit and risk. Bioessays. 1994; 16(4): 259-267.

Bustamante Filho IC. Estresse oxidativo na criopreservação do sêmen equino [dissertação]. Porto Alegre: Faculdade de Agronomia, Universidade Federal do Rio Grande do Sul; 2006.

Luck MR, Jeyaseelan I, Sholes RA. Mini review ascorbic acid and fertility. Biol Reprod. 1995; 52: 262-266.

Linde-forsberg C. Achieving canine pregnancy by using frozen or chilled extended semen. Vet Clin North Am. 1991; 21: 545-551.

Diarra MS, Pare JP, Roy G. Genetic and environmental factors affecting semen quality of young Holstein bulls. Can. J. Anim. Sci. 1997; 77: 77–85.

Mathevon M, Buhr MM, Dekkers JCM. Environmental, management and genetic factors affecting semen production in Holstein bulls. J. Dairy Sci. 1998; 81: 3321–3330.

Chandler JE, Adkinson RW, Hay GM, Crain RL. Environmental and genetic sources of variation for seminal quality in mature. Holstein bulls J. Dairy Sci. 1985; 68: 1270–1279.

Soderquist L, Janson L, Haard M, Einarsson S. Influence of season, age, breed and some other factors on the variation in sperm morphological abnormalities in Swedish dairy AI bulls. Anim. Reprod. Sci. 1996; 44: 91–98.

Maxwell WMC, Stojanov T. Liquid storage of ram semen in the absence or presence of some antioxidants. Reprod. Fertil. 1996; 8: 1013–1020.

De Lamirande E & Gagnon C. Impact of reactive oxygen species on spermatozoa: a balancing act between beneficial and detrimental effects. Hum. Reprod. 1995; 10 (1): 15–21.

Bucak, MN, Atessahim A, Yüce A. Effect of anti-oxidants and oxidative stress parameters on ram semen after the freezing-thawing process. Small Rumin. Res. 2008; 75: 128–134.

Peña FJ, Johannisson A, Wallgren M, Rodriguez Martinez H. Antioxidant supplementation in vitro improves boar sperm motility and mitochondrial membrane potential after cryopreservation of different fractions of the ejaculate. Anim Reprod Sci. 2003; 78: 85-98.

Bucak MN & Tekin N. Protective effect of taurine, guthatione and threalose on the liquid storage of ram semen. Small Rumin. Res. 2007; 73:103-108.

Câmara DR, Mello-Pinto MMC, Pinto LC, Brasil OO, Nunes JF, Guerra MMP. Effects of reduced glutathione and catalase on the kinematics and membrane functionality of sperm during liquid storage of ram semen. Small Rumin. Res. 2011; 100: 44– 49.

Aurich JE, Schonherr U, Hoppe, H, Aurich C. Effects of antioxidants on motility and membrane integrity of chilled-stored stallion semen. Theriogenology. 1997; 48: 185-192.

Ball BA, Medina V, Gravance CG, Baumber J. Effect of antioxidants on preservation of motility, viability and acrosomal integrity of equine spermatozoa during storage at 5ºC. Theriogenology. 2001; 56: 577-589.

Lindemann CB, O’brien J A, Giblin FJ. An investigation of the effectiveness of certain antioxidants in preserving the motility of reactivated bull sperm models. Biol Reprod. 1988; 38: 114-120.

Beccaglia M, Anastasi P, Chigioni S, Luvoni GC. Tris- lecithin extender supplemented with antioxidant catalase for chilling of canine semen. In: 6th Inter. Symposium on Canine and Feline Repro. & 6th Biannual European Vet. Soc. for Small Animal Repro. Congress; 2008, Vienna.

Michael AJ, Alexopoulos C, Pontiki EA, Hadjipavlou-litina DJ, Saratsis P, Ververidis HN, Boscos CM. Effect of antioxidant supplementation in semen extenders on semen quality and reactive oxygen species of chilled canine spermatozoa. Anim. Reprod. Sci. 2008; 112: 119-135.

Earle K E. Antioxidant nutrients: their role in a healthy diet. Vet. Int. 2000; 12: 2-7.

Downloads

Publicado

2023-04-19

Como Citar

1.
Alvarenga ML, Lopes BV, Chirinéa VH, Bittencourt RF, Lopes MD. SUPLEMENTAÇÃO DO MEIO DE REFRIGERAÇÃO ESPERMÁTICA COM VITAMINA C E CATALASE EM SÊMEN OBTIDO DE CÃES JOVENS E IDOSOS. RVZ [Internet]. 19º de abril de 2023 [citado 9º de outubro de 2024];20(4):673-82. Disponível em: https://rvz.emnuvens.com.br/rvz/article/view/1472

Edição

Seção

Artigos Originais

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)