IDENTIFICAÇÃO E PERFIL DE SENSIBILIDADE DE Enterobacter spp. ISOLADOS DE LEITE BOVINO CRU

Autores

  • Taila dos Santos Alves
  • Amanda Keller Siqueira
  • Mirtis Maria Giaciani Ferraz
  • Domingos da Silva Leite

Palavras-chave:

Enterobacteriaceae, Cronobacter sakazakii, Pantoea agglomerans, resistência, rebanho leiteiro

Resumo

A produção e o consumo de leite e derivados vêm aumentando anualmente no Brasil. A emergência do consumo de leite cru está relacionada à busca por produtos que mantenham preservadas suas propriedades nutricionais. Esta falsa ideia aumenta o risco do consumo de leite e derivados contaminados por micro-organismos patogênicos. As bactérias do gênero Enterobacter são amplamente distribuídas na natureza e fazem parte da microbiota do trato gastrointestinal humano e animal.  Enterobacter cloacae, Enterobacter aerogenes, Pantoea agglomerans Cronobacter sakazakii são apontadas como patógenos oportunistas. Nesse sentido, o estudo buscou a identificação e diferenciação bioquímica de espécies de Enterobacter spp. a partir de isolados de leite bovino cru, a caracterização do perfil de sensibilidade a antimicrobianos e a pesquisa de genes de resistência. A partir de 104 cepas de Enterobacter spp. foram identificadas E. cloacae (39), Pantoea agglomerans (23), Cronobacter sakazakii (18) e E. aerogenes (9). Destas, 26% apresentaram resistência a três ou mais antimicrobianos. O gene blaTEM foi encontrado em 27% dos isolados. Dessa forma, este estudo alerta quanto ao risco de infecções por micro-organismos resistentes, potencialmente patogênicos, associados ao consumo de leite bovino cru.

Referências

MilkPoint [homepage na internet]. Consumo de leite no Brasil ainda está aquém da quantidade recomendada pelo Ministério da Saúde. [acesso em 08 jul 2014]. Disponível em: http://www.milkpoint.com.br/cadeia-do-leite/giro-lacteo/

Claeys WL, Cardoen S, Daube G, Block J, Dewettinck K, Dierick K, et al. Raw or heated cow milk consumption: Review of risks and benefits. Food Control. 2013; 31: 251-262.

Salman AMA, Hamad IM. Enumeration and identification of coliform bacteria from raw milk in Khartoum State, Sudan. J Cell Anim Biol. 2011; 5: 121-128.

Mezzatesta ML, Gona F, Stefani S. Enterobacter cloacae complex: clinical impact and emerging antibiotic resistance. Future Microbiol. 2012; 7: 887-902.

Holt JG, et al. [editor]. Bergey's Manual of Determinative Bacteriology. 9ed. Baltimore: Williams & Wilkins; 1994.

Nazarowec-White M, Farber JM. Enterobacter sakazakii: a review. Int J Food Microbiol. 1997; 34: 103-113.

Healy B, Cooney S, O’Brien S, Iversen C, Whyte P, Nally J, et al. Cronobacter (Enterobacter sakazakii ): An opportunistic foodborne pathogen. Foodborne Pathog Dis. 2010; 7:339-350.

Wahyuni AETH, Budiarso TY. Detection of Enterobacter sakazakii and other Enterobacter sp from dairy cow’s milk in Boyolali and Sleman. Faculty of Animal Science, Bogor Agricultural University. The 1st International Seminar on Animal Industry. 2009; 74-77.

Cruz AT, Cazacu AC, Allen CH. Pantoea agglomerans, a plant pathogen causing human diasease. J. Clin. Microbiol. 2007; 45: 1989-1992.

Cetinkaya E, Joseph S, Ayhan K, Forsythe SJ. Comparison of methods for the microbiological identification and profiling of Cronobacter species from ingredients used in the preparation of infant formula. Mol Cell Probes. 2013; 27: 60- 64.

Kandhai MC, Reij MW, Gorris LGM, Guillaume-Gentil O, Scothorst M. Occurrence of Enterobacter sakazakii in food production environments and households. Lancet. 2004; 39-40.

Yan QQ, Condell O, Power K, Butler F, Tall BD, Fanning S. Cronobacter species (formerly known as Enterobacter sakazakii) in powdered infant formula: a review of our current understanding of the biology of this bacterium. J Appl Microbiol. 2012; 113: 1–15.

Al-Holy MA, Lin M, Abu-Ghoush MM, Al-Qadiri HM, Rasco BA. Thermal resistance, survival and inactivation of Enterobacter sakazakii (Cronobacter spp.) in powdered and reconstituted infant formula. J. Food Safety. 2009; 29: 287–301.

Njage PMK, Dolci S, Jans C, Wangoh J, Lacroix C, Meile L. Ampicillin resistance and extended spectrum β-lactamases in Enterobacteriaceae isolated from raw and spontaneously fermented camel milk. Afr J Microbiol Res. 2012; 6: 1446-1452.

Geser N, Stephan R, Hächler H. Occurrence and characteristics of extendedspectrum β-lactamase (ESBL) producing Enterobacteriaceae in food producing animals, minced meat and raw milk. BMC Vet Res. 2012; 8:21.

Pereira AS, Carmo Filho JR, Tognim MCB, Sader HS. Avaliação da acurácia de testes laboratoriais para detecção de amostras de Klebsiella pneumoniae produtora de β-lactamase de espectro estendido. J Bras Patol Med Lab. 2003; 39: 301-308.

Fay GD, Barry AL. Rapid ornithine decarboxylase test for the identification of Enterobacteriaceae. Appl Microbiol. 1972; 23: 710-713.

Brooks K, Sodeman T. A rapid method for determining decarboxylase and dihydrolase activity. J Clin Path. 1974; 27: 148-152.

Mc Faddin JF. Biochemical tests for identification of medical bacteria. Baltimore: William & Wilkins; 1980.

Farmer III JJ, Davis BR, Hickman-Brenner FW, McWhorter A, Huntley-Carter GP, Asbury MA. Biochemical identification of new species and biogroups of Enterobacteriaceae isolated from clinical specimens. J Clin Microbiol. 1985; 21: 46-76.

CLSI/NCCLS. Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance standards for antimicrobial disk susceptibility tests; approved standard - 8th ed. CLSI document M2-A9. Wayne, PA, USA: 2006.

Ribeiro MG. Princípios terapêuticos na mastite em animais de produção e de companhia. In: Andrade, S.F. (Ed). Manual de Terapêutica Veterinária. 3ed. Roca: São Paulo, 2008. 759-771 p.

Winn Jr WC, Allen SD, Janda WM, Koneman EW, Procop G, Schreckenberger PC, Woods, G. Diagnóstico Microbiológico. Texto e Atlas Colorido. 6ed. Guanabara Koogan: Rio de Janeiro, 2008. 1565p.

NCCLS. Performance Standards for Antimicrobial Disk Susceptibility Tests; Approved Standard—8th Ed. NCCLS document M2-A8, Wayne, PA, EUA, 2003

Féria C, Ferreira E, Correia JD, Gonçalves J, Caniça M. Patterns and mechanisms of resistance to β-lactams and β-lactamase inhibitors in uropathogenic Escherichia coli isolated from dogs in Portugal. J Antimicrob Chemother. 2002; 49: 77–85.

Cao V, Lambert T, Nhu DQ, Loan HK, Nguyen KH, Arlet G, Courvalin P. Distribution of extended-spectrum β-lactamases in clinical isolates of Enterobacteriacea in Vietnam. Antimicrob Agents Chemother. 2002; 46: 3739-3743.

Batchelor M, Hopkins K, Threlfall EJ, Clifton-Hadley FA, Stallwood AD, Davies RH, Liebana E . blaCTX-M genes in clinical Salmonella isolates recovered from humans in England and Wales from 1992 to 2003. Antimicrob. Agents Chemother. 2005; 49: 1319-1322.

Castro KNC, Comunello E. [homepage na internet]. Associativismo entre vendedores de leite em MS: melhor para o bolso do produtor e para a saúde do consumidor. Publicado em 28 de abril de 2010. [acesso em 16 abr 2010]. Disponível em: www.infobibos.com/artigos/2010_2

Drudy D, Mullane NR, Quinn T. Wall PG., Fanning S. Enterobacter sakazakii: An emerging pathogen in powdered infant formula. Clin Infect Dis. 2006; 42:996–1002.

Call DR, Davis MA, Sawant AA. Antimicrobial resistance in beef and dairy cattle production. Anim Health Res Rev. 2008; 9:159-167.

Oliver SP, Murinda SE. Antimicrobial resistance of mastitis pathogens. Vet Clin North Am Food Anim Pract. 2012; 28: 165-185.

Van den Bogard AE, Stobberingh EE. Epidemiology of resistance to antibiotics. Links between animals and humans. Int J Antimicrob Agents. 2000; 14: 327-335.

McEwen SA, Fedorka-Cray PJ. Antimicrobial use and resistance in animals. Clin Infect Dis. 2002; 34: 93-106.

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Publicado

2022-04-20

Como Citar

1.
Alves T dos S, Siqueira AK, Ferraz MMG, Leite D da S. IDENTIFICAÇÃO E PERFIL DE SENSIBILIDADE DE Enterobacter spp. ISOLADOS DE LEITE BOVINO CRU. RVZ [Internet]. 20º de abril de 2022 [citado 21º de dezembro de 2024];22(1):114-22. Disponível em: https://rvz.emnuvens.com.br/rvz/article/view/962

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