Laserterapia para tratamento de tendinopatia induzida em ratos wistar

Estudo histomorfométrico

Autores

  • Maria Verônica de Souza
  • Júlio Crepaldi
  • Thayne de Oliveira Silva
  • Mariana Brettas Silva
  • Gabriel Barbosa de Melo Neto
  • José do Carmo Lopes Moreira

DOI:

https://doi.org/10.35172/rvz.2017.v24.290

Palavras-chave:

tendão de Aquiles, laser de baixa potência, reparação tendínea

Resumo

O objetivo desse estudo foi avaliar os efeitos da laserterapia na lesão do tendão calcanear
comum de ratos Wistar. Foram utilizados 12 ratos machos adultos, distribuídos
aleatoriamente em dois grupos (L=laser e C=controle). Todos foram submetidos à
tendinopatia unilateral (escolha aleatória) mediante compressão transversal do tendão (10
segundos) com pinça Halstead mosquito, assim como escarificações (com bisturi). Após 24
horas da indução da lesão os animais do grupo L receberam laser (904 nm/3 J/cm²/9s) por 20
dias. Os do grupo C foram manipulados como se fossem receber a radiação. Após 3, 7, 14 e
21 dias da realização da lesão, três ratos de cada grupo foram submetidos à eutanásia, e os
tendões obtidos para análise histomorfométrica. As amostras foram processadas como de
rotina e os fragmentos corados com hematoxilina-eosina, tricrômico de Masson e Picrosirius
Red. Os dados foram analisados por ANOVA, a 5% de probabilidade e análise de regressão.
Não houve diferença entre grupos nem entre tempos para as características hemorragia,
angiogênese, espessamento do epitendão. Independente do tratamento ocorreu diminuição
(p=0,0129) da formação de aderência fibrinosa (do 3o ao 21o dias). Por outro lado, a avaliação
morfométrica revelou maiores (p=0,0120) quantidades de fibroblastos no grupo que recebeu
laserterapia, não havendo efeito de tempo. Avaliação semiquantitativa, revelou maiores
(p=0,0000) quantidades de fibroblastos no grupo tratado, porém nessa análise, a quantidade
dessas células aumentou com o tempo (p=0,0001) em ambos os grupos. Diferentemente,
ANOVA revelou redução do infiltrado inflamatório do 3o ao 21o dia em ambos os grupos
(histologia: p=0,0003; morfometria: p=0,0000). Embora não tenha ocorrido diferença entre
grupos na quantidade de fibras colágenas (I e III), a morfometria revelou que os ratos do
grupo L apresentaram maiores (p=0,0096) quantidades de fibras colágenas do que do grupo
C. Para essa característica, não ocorreu efeito do tempo, ainda que tenha sido observada maior
(p=0,0000) organização da deposição de colágeno (7o dia). A quantidade de fibras colágenas
determinada por histologia revelou efeito apenas do tempo (p=0,0005), independente do
tratamento, ocorrendo aumento dessa variável até o 14o dia, com posterior redução. A
laserterapia iniciada 24 horas após indução cirúrgica de lesão no tendão calcanear de ratos
Wistar apresenta a vantagem de aumentar em qualidade e quantidade as fibras colágenas,
assim como os fibroblastos, células fundamentais na síntese dos colágenos.

Referências

1. Warden SJ. Animal models for the study of tendinopathy. Br J Sports Med.
2007;41(4):232-40.
2. Andres BM, Murrell GAC. Treatment of tendinopathy: what works, what does not and
what is on horizon. Clin Orthop Relat Res. 2008;466(7):1539-54.
3. Medeiros UVD, Segatto GG. Lesões por esforços repetitivos (LER) e distúrbios
osteomusculares (Dort) em dentistas. Rev Bras Odontol. 2012;69(1):49-54.
4. Fillipin L, Mauriz JL, Vedoveli K, Moreira AJ, Zettler ZG, Lech O, et al. Low-level laser
therapy (LLLT) prevents oxidative stress and reduces fibrosis in rat traumatized Achilles
tendon. Lasers Surg Med. 2005;37(4):293-300.
5. Wang JH-C. Mechanobiology of tendon. J Biomech. 2006;39(9):1563-82.
6. Dahlgren LA. Pathobiology of tendon and ligament injuries. Clin Tech Equine Pract.
2007;6(3):168-73.
7. Souza MV, Pinto JO. Association between nonsteroidal anti-inflammatory drugs and
gastric ulceration in horses and ponies. In: Jianyuan C. Peptic ulcer disease. Rijeka:
Intech; 2011. p.463-86.
8. Salate ACB, Barbosa G, Gaspar P, Koeke PU, Parizotto NA, Benze BG, et al. Effect of
In-Ga-Al-P Diode laser irradiation on angiogenesis in partial ruptures of Achilles tendon
in rats. Photomed Laser Surg. 2005;23(5):470-5.
9. Moreira FF, Oliveira ELP, Barbosa FS, Silva JG. Laserterapia de baixa intensidade na
expressão de colágeno após lesão muscular cirúrgica. Fisioter Pesqui. 2011;18(1):37-42.
10. Pufe T, Petersen WJ, Mentlein R, Tillmann BN. The role of vasculature and
angiogenesis of degenerative tendons disease. Scand J Med Sci Sports. 2005;15(4):211-
22.
11. Silva MO, Costa MBM, Borges APB, Dornas RF, Moreira JCL, Souza MV. Indução de
tendinopatia em ratos Wistar: modelo experimental. Rev Acad Cienc Agrar Ambient.
2013;11(3):275-82.
12. Orhan Z, Ozturan K, Guven A, Cam K. The effect of extracorporeal shock waves on a rat
model of injury to tendo Achillis: a histological and biomechanical study. J Bone Joint
Surg Br. 2004;86(4):613-8.
13. Eliasson P, Andersson T, Aspenberg P. Achilles tendon healing in rats is improved by
intermittent mechanical loading during the inflammatory phase. J Orthop Res.
2012;30(2):274-9.
14. Van Schie HT, Bakker EM, Jonker AM, Van Weeren PR. Computerized
ultrasonographic tissue characterization of equine superficial digital flexor tendons by
means of stability quantification of echo patterns in contiguous transverse
ultrasonographic images. Am J Vet Res. 2003;64(3):366-75.
15. Abate M, Gravare-Silbernagel K, Siljeholm C, Di Lori A, De Amicis D, Salini V, et al.
Pathogenesis of tendinopathies: inflammation or degeneration? Arthritis Res Ther.
2009;11(3):1-15.
16. Sharma P, Maffulli N. Tendon injury and tendinopathy: healing and repair. J Bone Joint
Surg Am. 2005;87(1):187-202.
17. James R, Kesturu G, Balian G, Chhabra AB. Tendon: biology, biomechanics, repair,
growth, factors and envolving treatment options. J Hand Surg Am. 2008;33A(1):102-12.
18. Laraia SEM, Silva IS, Pereira DM, Reis FA, Almeida P, Leal Júnior ECP, et al. Effect of
low-level laser therapy (660 nm) on acute inflammation induced by tenotomy of Achilles
tendon in rats. Photochem Photobiol. 2012;88(6):1546-50.
19. Pohlers D, Brenmoehl J, Loffer I, Muller CK, Leipner C, Schultze-Mosgau S, et al.
TGF-β and fibrosis in different organs molecular pathway imprints. Biochim Biophys
Acta. 2009;1792(8):746-56.
20. McGrath MH. Peptide growth factors and wound healing. Clin Plast Surg.
1990;17(3):421-32.
21. Branton MH, Kopp JB. TGF-â and fibrosis. Microbes Infect. 1999;1(15):1349-65.
22. Klein MB, Yalamanchi N, Pham H, Longaker MT, Chang J. Flexor tendon healing in
vitro: effect of TGF-β on tendon cell collagen production. J Hand Surg Am.
2002;27(4):615-20.
23. Marcos RL. Efeito do laser de baixa potência (810 nM) na tendinite induzida por
colagenase em tendão calcâneo de ratos [tese]. São Paulo: Universidade de São Paulo;
2010.
24. Pires D, Xavier M, Araujo T, Silva Júnior JA, Aimbre F, Albertini R. Low-level laser
therapy (LLLT; 780 nm) acts differently on mRNA expression of anti- and proinflammatory mediators in an experimental model of collagenase-induced tendinitis in
rat. Lasers Med Sci. 2011;26(1):85-94.
25. Xavier M, de Souza RA, Pires VA, Santos AP, Aimbire F, Silva JA Jr, et al. Low-level
light-emitting diode therapy increases mRNA expressions of IL-10 and type I and III
collagens on Achilles tendinitis in rats. Lasers Med Sci. 2014;29(1):85-90.
26. Nakamura K, Kitaoka K, Tomita K. Effect of eccentric exercise on healing process of
injured patellar tendon in rats. J Orthop Sci. 2008;13(4):371-8.
27. Bjordal JM, Lopes-Martins RAB, Joensen J, Couppe C, Ljunggren AE, Stergioulas A, et
al. A systematic review with procedural assessments and meta-analysis of low level laser
therapy in lateral elbow tendinopathy (tennis elbow). BMC Musculoskelet Disord.
2008;9(75):1-15.
28. Lins RDAU, Dantas EM, Lucena KCR, Catão MHCV, Granville-Garcia AF, Carvalho
Neto LG. Efeitos bioestimulantes do laser de baixa potência no processo de reparo. An
Bras Dermatol. 2010;85(6):849-55.
29. Lui PPY, Cheuk YC, Hung LK, Fu SC, Chan KM. Increased apoptosis at the late stage of
tendon healing. Wound Repair Regen. 2007;15(5):702-7.
30. Guerra FR, Vieira CP, Almeida MS, Oliveira LP, Aro AA, Pimentel ER. LLLT improves
tendon healing through increase of MMP activity and collagen synthesis. Lasers Med
Sci. 2013;28(5):1281-8.
31. Medrado ARAP, Pugliese LS, Reis SRA, Andrade ZA. Influence of low level laser
therapy on wound healing and its biological action upon myofibroblasts. Lasers Surg
Med. 2003;8(3):239-44.
32. Barbosa D, Souza RA, Carvalho WRG, Xavier M, Carvalho PK, Cunha CR, et al. Lowlevel laser therapy combined with platelet-rich plasma on the healing calcaneal tendon: a
histological study in a rat model. Lasers Med Sci. 2013;28(6):1489-94.
33. Kajikawa Y, Morihara T, Sakamoto H, Matsuda K, Oshima Y, Yoshida A, et al. Plateletrich plasma enhances the initial mobilization of circulation-derived cells for tendon
healing. J Cell Physiol. 2008;215(3):837-45.
34. Barbato KBG. Efeito do uso de antiinflamatório e do exercício aeróbico sobre a
regeneração tecidual e perfil biomecânico do tendão calcâneo de ratos após ruptura
completa [tese]. Rio de Janeiro: Universidade do Estado do Rio de Janeiro; 2011.
35. Silva MO. Efeitos da laserterapia de baixa potência associada ou não a exercício
excêntrico no tratamento de tendinopatia induzida do tendão calcanear comum de ratos
(Rattus norvegicus) [dissertação]. Viçosa: Universidade Federal de Viçosa; 2013.

Downloads

Publicado

2017-09-29

Como Citar

1.
de Souza MV, Crepaldi J, de Oliveira Silva T, Brettas Silva M, Barbosa de Melo Neto G, do Carmo Lopes Moreira J. Laserterapia para tratamento de tendinopatia induzida em ratos wistar: Estudo histomorfométrico. RVZ [Internet]. 29º de setembro de 2017 [citado 28º de março de 2024];24(3):538-53. Disponível em: https://rvz.emnuvens.com.br/rvz/article/view/290

Edição

Seção

Artigos Originais

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)