Evaluación de la técnica de electroforesis en gel con gradiente de temperatura como un método de estudio de la microbiota cecal de pollos de engorde
Palabras clave:
Salmonella, pollos, TGGE, microbiota intestinal, inmunidadResumen
En la actualidad se requiere la producción de aves de corral acelerado desarrollo y la
eficiencia productiva máxima, que sólo puede ser proporcionado tomando como base una
homeostasis fisiológica intestinal, que sólo se puede lograr mediante el establecimiento de
una microflora saludable. En general, se acordó que la microbiota afecta tanto al sistema
inmunológico, local y sistémica, como el uso de la dieta, por lo que el objetivo de este estudio
fue evaluar la composición de la microbiota cecal de las aves durante la vida útil de 42 días,
utilizando la técnica de electroforesis en gel con gradiente de temperatura (TGGE), aún no
explotado por la avicultura. Nuestros resultados demostraron una composición de la
microbiota estable durante todo el período de estudio, sin embargo, un refinamiento de los
estudios técnicos y de otro puede proporcionar información adicional.
Citas
Hypotheses. 2010;74(4):634-8.
2. Crhanova M, Hradecka H, Faldynova M, Matulova M, Havlickova H, Sisak F, et al.
Immune response of chicken gut to natural colonization by gut microflora and to
Salmonella enterica serovar enteritidis infection. Infect Immun. 2011;79(7):2755-63.
3. Methner U, Barrow PA, Gregorova D, Rychlik I. Intestinal colonisation-inhibition and
virulence of Salmonella phoP, rpoS and ompC deletion mutants in chickens. Vet
Microbiol. 2004;98(1):37-43.
4. Muzyer G, Smalla K. Application of denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) and
temperature gradiente gel electrophoresis (TGGT) in microbial ecology. Antonie Van
Leeuwenhoek. 1998;73(1):127-41.
5. Chadalavada DM, Bevilacqua PC. Analyzing RNA and DNA folding using temperature
gradient gel electrophoresis (TGGE) with application to in vitro selections. Methods
Enzimol. 2009;468:389-408.
6. Ercolini D. PCR-DGGE fingerprinting: novel strategies for detection of microbes in
food. J Microbiol Methods. 2004;56(3):297-314.
7. Seidavi A. Molecular approaches for the study of genetic diversity in microflora of
poultry gastrointestinal tract. In: Caliskan M. Analysis of genetic variation in animals.
Rijeka: InTech; 2012. p.83-104.
8. Zoetendal EG, Akkermans ADL, de Vos WM. Temperature gradient gel electrophoresis
analysis from human fecal samples reveals stable and host-specific communities of active
bacteria. Appl Environ Microbiol. 1998;64(1):3854-59.
9. Van der Wielen PWJJ, Lipman LJ, Van Knapen F, Biesterveld S. Competitive exclusion
of Salmonella enterica serovar Enteritidis by Lactobacillus crispatus and Clostridium
lactatifermentans in a sequencing fed-batch culture. Appl Environ Microbiol.
2002;68(3):555-9.
10. pajalahti JH, Särkilahti LK, Mäki BR, Heikkinen JP, Nurminen PH, Holben WE.
Effective recovery of bacterial DNA and percent-guanine-plus-cytosine-based analysis of
community structure in the gastrointestinal tract of broiler chickens. Appl Environ
Microbiol. 1998;64(10):4084-8.
11. Amit-romach E, Sklan D, Uni Z. Microflora ecology of the chicken intestine using 16S
ribosomal DNA primers. Poult Sci. 2004;83(7):1093-8.
12. Pedroso AA, Menten JF, Lambais MR, Racanicci AMC, Longo FA, Sorbara JOB.
Intestinal bacterial community and growth performance of chickens fed diets containing
antibiotics. Poult Sci. 2006;85(4):747-52.
13. Simpson JM, McCracken VJ, White BA, Gaskins HR, Mackie RI. Application of
denaturant gradient gel electrophoresis for the analysis of the porcine gastrointestinal
microbiota. J Microbiol Methods. 1999;36(3):167-79.
14. Jackson S, James M, Abrams P. The effect of oestradiol on vaginal collagen metabolism
in postmenopausal women with genuine stress incontinence. BJOG. 2002;109(3):339-44.
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