Avaliação da técnica de eletroforese em gel com gradiente de temperatura como método de estudo da microbiota cecal de frangos de corte
Palavras-chave:
Salmonella, frangos, TGGE, microbiota intestinal, imunidadeResumo
Exigem-se atualmente das aves de produção um desenvolvimento acelerado e máxima
eficiência produtiva, o que só pode ser obtido tendo-se como base uma homeostase fisiológica
intestinal, a qual só será possível mediante o estabelecimento de uma microbiota saudável. É
de consenso geral que a microbiota afeta tanto o sistema imune, local e sistêmico, quanto o
aproveitamento da dieta, por isso, o objetivo do presente estudo foi avaliar a composição da
microbiota cecal das aves ao longo dos 42 dias de vida, utilizando-se da Técnica de
Eletroforese em Gel com Gradiente de Temperatura (TGGE), ainda não explorada pela
avicultura. Os resultados demonstraram uma estabilidade da composição da microbiota ao
longo do período avaliado, entretanto, um refinamento da técnica e outros estudos podem
trazer informações complementares.
Referências
Hypotheses. 2010;74(4):634-8.
2. Crhanova M, Hradecka H, Faldynova M, Matulova M, Havlickova H, Sisak F, et al.
Immune response of chicken gut to natural colonization by gut microflora and to
Salmonella enterica serovar enteritidis infection. Infect Immun. 2011;79(7):2755-63.
3. Methner U, Barrow PA, Gregorova D, Rychlik I. Intestinal colonisation-inhibition and
virulence of Salmonella phoP, rpoS and ompC deletion mutants in chickens. Vet
Microbiol. 2004;98(1):37-43.
4. Muzyer G, Smalla K. Application of denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) and
temperature gradiente gel electrophoresis (TGGT) in microbial ecology. Antonie Van
Leeuwenhoek. 1998;73(1):127-41.
5. Chadalavada DM, Bevilacqua PC. Analyzing RNA and DNA folding using temperature
gradient gel electrophoresis (TGGE) with application to in vitro selections. Methods
Enzimol. 2009;468:389-408.
6. Ercolini D. PCR-DGGE fingerprinting: novel strategies for detection of microbes in
food. J Microbiol Methods. 2004;56(3):297-314.
7. Seidavi A. Molecular approaches for the study of genetic diversity in microflora of
poultry gastrointestinal tract. In: Caliskan M. Analysis of genetic variation in animals.
Rijeka: InTech; 2012. p.83-104.
8. Zoetendal EG, Akkermans ADL, de Vos WM. Temperature gradient gel electrophoresis
analysis from human fecal samples reveals stable and host-specific communities of active
bacteria. Appl Environ Microbiol. 1998;64(1):3854-59.
9. Van der Wielen PWJJ, Lipman LJ, Van Knapen F, Biesterveld S. Competitive exclusion
of Salmonella enterica serovar Enteritidis by Lactobacillus crispatus and Clostridium
lactatifermentans in a sequencing fed-batch culture. Appl Environ Microbiol.
2002;68(3):555-9.
10. pajalahti JH, Särkilahti LK, Mäki BR, Heikkinen JP, Nurminen PH, Holben WE.
Effective recovery of bacterial DNA and percent-guanine-plus-cytosine-based analysis of
community structure in the gastrointestinal tract of broiler chickens. Appl Environ
Microbiol. 1998;64(10):4084-8.
11. Amit-romach E, Sklan D, Uni Z. Microflora ecology of the chicken intestine using 16S
ribosomal DNA primers. Poult Sci. 2004;83(7):1093-8.
12. Pedroso AA, Menten JF, Lambais MR, Racanicci AMC, Longo FA, Sorbara JOB.
Intestinal bacterial community and growth performance of chickens fed diets containing
antibiotics. Poult Sci. 2006;85(4):747-52.
13. Simpson JM, McCracken VJ, White BA, Gaskins HR, Mackie RI. Application of
denaturant gradient gel electrophoresis for the analysis of the porcine gastrointestinal
microbiota. J Microbiol Methods. 1999;36(3):167-79.
14. Jackson S, James M, Abrams P. The effect of oestradiol on vaginal collagen metabolism
in postmenopausal women with genuine stress incontinence. BJOG. 2002;109(3):339-44.
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